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FL6000雙調(diào)制葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x
FL6000雙調(diào)制葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量?jī)x

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FL6000雙調(diào)制葉綠素?zé)晒鈨x是FL3500雙調(diào)制葉綠素?zé)晒鈨x的**升級(jí)版,專(zhuān)門(mén)用于對(duì)藍(lán)綠藻或綠藻等微藻,葉綠體或類(lèi)囊體懸浮物進(jìn)行光合作用深入機(jī)理研究的強(qiáng)大科研工具。儀器具備雙通道測(cè)量控制,可控制測(cè)量樣品的溫度,并配備單翻轉(zhuǎn)光(STF),內(nèi)置多種可用戶自行修改的測(cè)量程序,可進(jìn)行目前國(guó)際上對(duì)于葉綠素?zé)晒獾母鞣N深入機(jī)理研究。其核心結(jié)構(gòu)是包含了一個(gè)懸浮液標(biāo)準(zhǔn)樣品杯的光學(xué)測(cè)量頭,內(nèi)置3LED光源和1個(gè)500 kHz/16 AD轉(zhuǎn)換的PIN二極管信號(hào)檢測(cè)器。AD轉(zhuǎn)換的增益和積分時(shí)間可以通過(guò)軟件控制。檢測(cè)器測(cè)量葉綠素?zé)晒庑盘?hào)的時(shí)間分辨率可高達(dá)4 μs(快速版為1μs)。

應(yīng)用領(lǐng)域:

· 植物光合特性和代謝紊亂篩選

· 生物和非生物脅迫的檢測(cè)

· 植物抗脅迫能力或者易感性研究

· 代謝混亂研究

· 光合系統(tǒng)工作機(jī)理研究

· 受脅迫植物光合生理應(yīng)對(duì)策略研究

典型樣品:

· 藍(lán)藻(藍(lán)細(xì)菌)

· 綠藻

· 葉綠體懸浮物

· 類(lèi)囊體懸浮物

· 植物碎片

功能特點(diǎn):

· 內(nèi)置葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)測(cè)量、PAM(脈沖調(diào)制)測(cè)量、OJIP快速熒光動(dòng)力學(xué)測(cè)量、QA–再氧化動(dòng)力學(xué)、S狀態(tài)轉(zhuǎn)換、葉綠素?zé)晒獯銣绲葴y(cè)量程序,是世界上公認(rèn)的功能*為全面的葉綠素?zé)晒鈨x

· 雙調(diào)制技術(shù),可雙色調(diào)制測(cè)量光,具備調(diào)制光化學(xué)光和持續(xù)光化學(xué)光,可進(jìn)行STF(單周轉(zhuǎn)光閃)、TTF(雙周轉(zhuǎn)光閃)和MTF(多周轉(zhuǎn)光閃)及定制FRR技術(shù)(Fast Repetition Rate)測(cè)量

· 標(biāo)準(zhǔn)版時(shí)間分辨率達(dá)4μs,快速版更高達(dá)1μs,是目前時(shí)間分辨率**的葉綠素?zé)晒鈨x

· 控制單元為雙通道,可連接溫度傳感器用于溫度控制、連接氧氣測(cè)量單元用于希爾反應(yīng)測(cè)量等

· 具備極高靈敏度,*低檢測(cè)極限為1μg Chla/L

· 測(cè)量光、光化光、飽和單反轉(zhuǎn)光光源顏色、強(qiáng)度均可定制

· 主機(jī)配備彩色觸摸顯示屏,可實(shí)時(shí)查看熒光曲線圖

技術(shù)參數(shù):

· 實(shí)驗(yàn)程序:葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)測(cè)量;PAM(脈沖調(diào)制)測(cè)量;OJIP快速熒光動(dòng)力學(xué)測(cè)量;QA–再氧化動(dòng)力學(xué);S狀態(tài)轉(zhuǎn)換;快速葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)

· 熒光參數(shù):

ú PAM熒光淬滅動(dòng)力學(xué)測(cè)量:F0,Fm,FvF0,Fm,FvQY(II),NPQ,ΦPSIIFv/Fm,Fv’/Fm,Rfd,qNqP,ETR50多項(xiàng)葉綠素?zé)晒鈪?shù)與曲線;

ú OJIP快速熒光動(dòng)力學(xué)測(cè)量:OJIP曲線與F0、FJ、FiFm、FvVJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0Fv / Fm、M0、AreaFix AreaSM、SSN、Phi_P0Psi_0、Phi_E0Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC20多項(xiàng)相關(guān)參數(shù);

ú QA–再氧化動(dòng)力學(xué)(QA-reoxidation kinetics):測(cè)量QA–再氧化動(dòng)力學(xué)曲線,用于擬合QA–再氧化過(guò)程中快相(Fast phase)、中間相(Middle phase)和慢相(Slow phase)各自的振幅(A1,A2A3)和時(shí)間常數(shù)(T1,T2T3

ú S狀態(tài)轉(zhuǎn)換(S-state test):S-state test熒光衰減曲線,用于擬合計(jì)算無(wú)活性光系統(tǒng)IIPSIIX)反應(yīng)中心數(shù)量

ú 提供用戶自定義protocol功能,可實(shí)現(xiàn)PSII天線異質(zhì)性PSIIαPSIIβ分析、PSII有效天線截面積(s PSII)等參數(shù)的測(cè)量(僅限快速版)

QA–再氧化動(dòng)力學(xué)曲線和S-state test熒光衰減曲線(Li,2010

· 時(shí)間分辨率(采樣頻率):高靈敏度檢測(cè)器,標(biāo)準(zhǔn)版時(shí)間分辨率為4μs,快速版為1μs

· *低檢測(cè)極限:1μg Chla/L

· 控制單元:配備彩色觸摸顯示屏,可實(shí)時(shí)查看熒光曲線圖

· Superhead測(cè)量室:

o 測(cè)量光閃:617nm紅橙光和455nm藍(lán)光,光閃時(shí)間25μs

o 單周轉(zhuǎn)飽和光閃:標(biāo)準(zhǔn)光源為630nm紅光,可選配455nm藍(lán)光,**光強(qiáng)80000 μmol(photons)/m2.s,光閃時(shí)間2050μs

o 持續(xù)光化學(xué)光:標(biāo)準(zhǔn)光源為630nm紅光,可選配455nm藍(lán)光,任選其一,**光強(qiáng)3000 μmol(photons)/m2.s

o 樣品試管:底面積10×10mm,容積4ml

o AD轉(zhuǎn)換器:500 kHz/16bit

· 定制superhead測(cè)量室(選配):可分別定制測(cè)量光、飽和光閃和光化學(xué)光顏色(藍(lán)色、青色、琥珀色等)以及檢測(cè)波段(ChlA,ChlB

· 遠(yuǎn)紅外光源(選配):用于激發(fā)光系統(tǒng)I,波長(zhǎng)735nm

· 氧氣測(cè)量模塊(選配):測(cè)量藻類(lèi)的氧氣釋放

· 溫度控制(選配):TR 2000溫度調(diào)節(jié)器,控溫范圍070℃,精確度0.1

· 電磁攪拌(選配)密封不銹鋼外殼,IP64防護(hù)等級(jí),手動(dòng)轉(zhuǎn)扭調(diào)速100-1000rpm,8mm×3mm標(biāo)準(zhǔn)磁力棒

· 通訊接口:USB

· FluorWin軟件:定義或創(chuàng)建實(shí)驗(yàn)方案、光源控制設(shè)置、數(shù)據(jù)輸出、分析處理和圖表顯示

典型應(yīng)用:

1. 中科院水生生物所王強(qiáng)研究員使用FL3500葉綠素?zé)晒鈨x(FL6000之前型號(hào))和TL植物熱釋光系統(tǒng)證明亞硝酸鹽脅迫首先影響Synechocystis sp. PCC 6803 PSII受體側(cè)(Zhan X, et al, 2017)。這種光合作用深入機(jī)理的研究經(jīng)常需要這兩種儀器來(lái)配合完成。

2.中科院新疆生態(tài)與地理研究所潘響亮研究員及其課題組使用FL3500葉綠素?zé)晒鈨x(FL6000之前型號(hào))深入開(kāi)展了環(huán)境中重金屬、鹽分、有毒化合物、除草劑、殺蟲(chóng)劑、抗生素等各種有害物質(zhì)對(duì)藻類(lèi)的毒理研究。通過(guò)FL3500獨(dú)有的高分辨率OJIP快速熒光動(dòng)力學(xué)測(cè)量、QA–再氧化動(dòng)力學(xué)、S狀態(tài)轉(zhuǎn)換等葉綠素?zé)晒鉁y(cè)量程序,全面揭示了不同濃度與處理時(shí)間對(duì)藻類(lèi)光合系統(tǒng)造成損傷的毒理機(jī)制及其生態(tài)影響。目前,潘響亮課題組已經(jīng)使用FL3500FL6000之前型號(hào))在國(guó)際SCI期刊與國(guó)內(nèi)核心期刊上發(fā)表了二十余篇高水平文章。

產(chǎn)地:捷克

部分參考文獻(xiàn):

1. Manaa A.,et al. (2019)Salinity tolerance of quinoa (Chenopodium quinoa Willd) as assessed by chloroplast ultrastructure and photosynthetic performance. Environmental and Experimental Botany, Volume 162, Pages 103-114

2. Sicora C. I., et al. (2019)Regulation of PSII function in Cyanothece sp. ATCC 51142 during a light–dark cycle. Photosynthesis Research, Volume 139, Issue 1–3, pp 461–473

3. Smythers A. L.,et al. (2019)Characterizing the effect of Poast on Chlorella vulgaris, a non-target organism. Chemosphere, Volume 219, Pages 704-712

4. Albanese P.,et al. (2018) Thylakoid proteome modulation in pea plants grown at different irradiances: quantitative proteomic profiling in a nonmodel organism aided by transcriptomic data integration. The Plant JournalVolume96, Issue4Pages 786-800

5. Antal T., Konyukhov I., Volgusheva A., et al. (2018) Chlorophyll fluorescence induction and relaxation system for the continuous monitoring of photosynthetic capacity in photobioreactors. Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

6. Antal T. K., Maslakov A., Yakovleva O. V., et al. (2018). Simulation of chlorophyll fluorescence rise and decay kinetics, and P700-related absorbance changes by using a rule-based kinetic Monte-Carlo method. Photosynthesis Research. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2

7. Biswas S., Eaton-Rye J. J. (2018). PsbY is required for prevention of photodamage to photosystem II in a PsbM-lacking mutant of Synechocystis sp. PCC 6803. Photosynthetica, 56(1), 200–209.

8. Bonisteel E. M., et al. (2018).Strain specific differences in rates of Photosystem II repair in picocyanobacteria correlate to differences in FtsH protein levels and isoform expression patterns. PLoS ONE 13(12): e0209115.

9. Fang X., et al. (2018).Transcriptomic responses of the marine cyanobacterium Prochlorococcus to viral lysis products. Environmental Microbiology, doi: 10.1101/394122.

10. Kuthanová Trsková E., Belgio E., Yeates A. M., et al. (2018) Antenna proton sensitivity determines photosynthetic light harvesting strategy, Journal of Experimental Botany, Volume 69, Issue 18, 14 August 2018, Pages 4483–4493

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